(loc. sust. f.) — [Dinámica colonial y cebado] — Ingl.: _cuticular absorption, cuticular penetration_ **Descripción:** Penetración de sustancias (insecticidas de contacto, conidios de [[hongos entomopatógenos]], metabolitos) a través de las capas de la [[cutícula]] del insecto; en [[termitas]], la ruta cuticular es la principal vía de entrada de [[hongos entomopatógenos]] como _Metarhizium anisopliae_ y _[[Beauveria bassiana]]_, cuyos conidios se adhieren a la epicutícula, germinan, forman apresorios y perforan mecánica y enzimáticamente la [[cutícula]] hasta alcanzar el hemocele. **Descripción ampliada:** La infección fúngica cuticular sigue una secuencia bien establecida: (1) adhesión de los conidios a la epicutícula mediante interacciones hidrofóbicas y proteínas adhesinas (Mad1, Mad2) e hidrofobinas; (2) germinación del conidio y formación de un tubo germinativo entre 6–24 h post‑inoculación; (3) diferenciación de un apresorio, estructura que genera elevada presión de turgencia (hasta varias atmósferas) para perforar mecánicamente la epicutícula lipídica; y (4) producción simultánea de enzimas líticas (proteasas Pr1/Pr2, quitinasas Chit1–4, lipasas) que degradan la procutícula rica en quitina y proteínas, permitiendo que la hifa penetrante alcance la epidermis y el hemocele en unas 24–48 h. En termitas subterráneas (_Heterotermes tenuis_, _Coptotermes curvignathus_), estudios con microscopía electrónica han documentado que _M. anisopliae_ penetra la [[cutícula]] entre 24–48 h post‑inoculación, coloniza el hemocele con blastosporas a las 96 h y completa la conidiogénesis sobre el [[cadáver]] entre 96–144 h, mientras que _B. bassiana_ sigue un ciclo similar pero algo más lento; la penetración se concentra preferentemente en zonas menos esclerotizadas como intersegmentos, patas y bases antenales, evitando la cápsula cefálica fuertemente endurecida. Además de los hongos, la [[absorción cuticular]] es también la ruta de entrada de insecticidas de contacto (p.ej. [[fipronil]], imidacloprid en formulaciones líquidas), cuya velocidad de penetración depende del grosor de la cutícula, la composición lipídica de la epicutícula y la [[formulación]] del producto. **Ayuda para entender:** En sencillo, la "[[absorción cuticular]]" es el proceso por el que algo de fuera atraviesa la "piel" ([[cutícula]]) de la termita. Es la puerta de entrada más importante para los hongos entomopatógenos: sus esporas se pegan a la superficie de la termita, germinan, forman una especie de "ventosa a presión" (apresorio) y la perforan con fuerza mecánica y enzimas que digieren la quitina, hasta llegar a la sangre (hemocele) del insecto y matarlo desde dentro. **Sinónimos:** Penetración cuticular; absorción percutánea (en contexto entomológico); infección transcuticular (hongos). **Términos relacionados:** - **Apresorio:** Estructura fúngica especializada que genera presión de turgencia para perforar mecánicamente la cutícula del insecto. - **Enzimas [[cutícula]]‑degradantes:** Proteasas (Pr1, Pr2), quitinasas y lipasas secretadas por hongos entomopatógenos para digerir las capas de la cutícula. - **[[Hongos entomopatógenos]] (EPF):** _Metarhizium_, _Beauveria_ y otros géneros que infectan insectos principalmente por penetración cuticular directa. **Bloque:** Control biológico de termitas / 1. Ruta cuticular de infección fúngica y absorción de insecticidas de contacto. **Fuentes (source):** - Mora‑Del Pozo et al. (2019); Ortiz‑Urquiza & Keyhani. _Is the Insect Cuticle the Only Entry Gate for Fungal Infection?_ (adhesión, germinación, apresorio, enzimas líticas Pr1/Pr2 y quitinasas; ruta cuticular como principal vía de infección fúngica).[](https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC6616882/)​ - Ortiz‑Urquiza & Keyhani (2013). _Action on the Surface: Entomopathogenic Fungi versus the Insect Cuticle_ (secuencia de penetración cuticular, enzimas hidrolíticas, alteración de hidrocarburos cuticulares). - Lai et al. (2024). _Fights on the surface prior to fungal invasion of insects_ (proteínas adhesivas, competencia con microbiota cuticular, generación de presión de turgencia para perforar la [[cutícula]]). - Lopes et al. (2002). _External development of B. bassiana and M. anisopliae in the subterranean termite H. tenuis_ (cronología detallada por SEM: adhesión 0–6 h, germinación 12–24 h, penetración 24–48 h, colonización 48–96 h, conidiogénesis 96–144 h).[](https://www.scielo.br/j/sa/a/LhSKHRNDfWc7H3WMLN9pJHv/)​ - Ramle et al. (2021). _Interaction between M. anisopliae and its host C. curvignathus_ (adhesión, apresorio, penetración 6–12 h, blastosporas en hemocele a 96 h, expresión de proteasas cuticulares).[](https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC8065498/)​